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编号:10271490
西拉普利和牛磺酸对慢性缺氧肺组织细胞凋亡的影响
http://www.100md.com 《中国病理生理杂志》 1999年第7期
     作者:黄文杰 邹霞英 姜辉

    单位:黄文杰 邹霞英 姜辉 广州军区广州总医院呼吸内科(510010 广州)

    关键词:牛磺酸;细胞低氧;肺

    中国病理生理杂志/990728 摘 要 目的:初步观察西拉普利和牛磺酸对慢性缺氧肺 组织细胞凋亡的影响。方法:采用原位末端标记法。 结果:缺氧模型及西拉普利组细胞凋亡明显高于其他各组(P<0.01) ,而牛磺酸组、自然恢复组则与正常对照无差异。结论:西拉普利可能诱 发细胞凋亡的作用,细胞凋亡的发生与否可能与肺动脉高压的形成与发展有关。

    Influence of cilazapril and taurine on apoptosis of chronic hypo xic lung tissue

    HUANG Wen-Jie, ZOU Xia-Ying, JIANG Hui
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    Division of Respiratory Medicine, Guangzhou General Hospital Guangzhou (5 10010)

    Abstract AIM:The influence of cilazapril and taurine on apopto sis of chronic hypoxic lung tissues was observed. METHOD:The in situ end-labelling procedure was used. RESULT S:The number of all apoptosis in hypoxic model and Cilazapril groups w as much greater than those of other groups(P<0.01). There was no difference between the natural recovery group and normal controls. CONCLUSION:Cilazapril might induce apoptosis, and apoptosis might be related to the forma tion and development of pulmonary hypertension.
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    MeSH Taurine; Cell hypoxia; Lung

    细胞凋亡在组织稳态中发挥重要作用,在血管系统生长发育和病理条 件下可出现[1,2]。血管活性物质如一氧化氮(nitric oxide,NO)和血管紧张素 Ⅱ(angiotensio n Ⅱ,Ang Ⅱ)对血管平滑肌细胞的凋亡有调节作用。有人推测,在肺动脉高压的形成过程 中 ,这些调节血管紧张度、细胞增殖和细胞死亡的血管活性物质之间量的失衡可造成稳态平衡 被破坏[3]。为探讨细胞凋亡和缺氧性肺动脉高压之间可能存在的关系,以及一些 扩血管药物对细胞凋亡的影响,我们就西拉普利和牛磺酸对慢性缺氧肺组织细胞凋亡的影响 进行了初步研究。

    材料与方法

    1.动物选择与分组:Wistar雄性大鼠,体重200 g左右,随机等分为5组,每组6只:A组为 正常对照组;B组为常 压间隙缺氧并饮牛磺酸;C组为缺氧并胃饲西拉普利;D组为缺氧后自然恢复;E组为缺氧模 型,复制后未做任何处理立即处死。
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    2.动物处理:参照薛全福等[4]方法,将B、C、D、E组置于氧浓度为(10±0.5)%的常压缺氧仓 内,每天持续缺氧8 h,共41 d。E组大鼠于第41 d缺氧模型建成后立即处死,而B组大鼠每 天饮含2%牛磺酸的自来水,C组则每天胃饲西拉普利1.25 mg/只,D组只饮自来水。此3组置 于同样的饲养环境中,继续喂养4周后处死,开胸取肺组织做冰冻切片。

    3.原位末端标记检测[5]:冰冻切片用双蒸水洗3次,每次3 min。加标记反应液,50 μL反应液中含末端转移酶(TdT,P romega公司)10μL×TdT Buffer,dig-11-dUTP(宝灵曼公司)0.5 nmols,37℃ 1 h,然后于4 ℃过夜。次日用双蒸水洗3次,加羊血清封闭,37℃ 30 min。加入碱性磷酸酶连接的抗地高 辛抗体(anti-dig-Ap,宝灵曼公司)0.67 U/100 μL 37℃ 40 min,双蒸水洗3次后用NBT/BCI P显色,以细胞核染成紫色为阳性判断标准。以不加dig-11-dUTP、不加anti-dig-Ap为阴性 对照。每组切片随机观察20个高倍视野的凋亡细胞数,取其平均值。
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    4.统计处理:用SAS统计学软件进行单因素5水平方差分析。所有数据以均数±标准差表示。

    结 果

    1.各组大鼠光镜下肺组织改变:E组大鼠光镜下主要改变为肺小动脉中膜肥厚、结缔组织增 多,血管腔严重狭窄或闭塞,有的血管腔还可见均质无细胞结构的物质栓塞。细支气管扩张 、管壁水肿、炎细胞浸润、局限性肺气肿、肺不张、肺间质增宽、炎症。C组和B组炎性细胞 明显少于E组,肺泡扩张较轻,肺小动脉管壁较薄,管腔狭窄不及E组明显,管腔中未见均质 无细胞结构物质栓塞,其中尤以C组更明显。D组上述改变虽较E组轻,但仍比C组和B组严重 ,管腔中仍可见均质无细胞结构的物质栓塞。

    2.各组大鼠肺组织细胞凋亡变化:如图1所示,E组和C组凋亡细胞数明显高于其他各组( P<0.01),以E组值为最高,与C组相比亦有显著性差异(P<0.01)。图2~4分别为 原位末端标记法对正常、E组及C组肺组织的检测照片,可见凋亡细胞核质固缩呈圆形或 马蹄形、环形、附着于核内膜处,核周有环形透亮区。正常肺组织凋亡细胞少见。
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    Fig 1 Comparison of cell number of apoptosis among

    all group s(±s,n=6)

    P<0.01, vs A,B,D groups);**P<0.01, vs other groups

    图1 各组凋亡细胞数的比较

    Fig 2 Detection of normal lung tissues with

    in situ end-labelling(×150)
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    图2 原位末端标记法对正常肺组织的检测

    Fig 3 Detection of hypoxic lung tissues with in situ end-labelling, apoptotic cells increased significantly(×150)

    图3 原位末端标记法对缺氧肺组织的检测Fig

    4 Detection of lung tissues of Cilazapril group with in situ end-label ling, apoptotic cells increased significantly(×150)
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    图4 原位末端标记法对西拉普利治疗组肺组织的检测

    讨 论

    生物体内各种组织细胞的数量经常保持在一种相对平衡的状态。这种稳态的维持有赖于各类 细胞有规律地分裂、分化和死亡。细胞凋亡是细胞的一种基本生命现象,是一个清除器官或 组织中多余细胞(包括损伤细胞和癌变前细胞)的过程。普遍认为,缺氧可造成细胞死亡,其 死亡的表现形式为坏死。但近年来对细胞一些生化特征变化的观察发现,缺氧可能诱导细胞 凋亡,凋亡和死亡路径可同时被低氧条件激活[6]。肺血管结构改建在肺动脉高压中的作用已愈来愈受到重视,甚 至有人认为肺动脉高压不是功 能性疾病,而是结构性疾病。在慢性缺氧引起的血管损伤、愈合和适应过程中,肺动肺壁的 所有细胞均发生增殖。而血管平滑肌细胞凋亡被认为有助于组织稳态和内膜损伤的减轻 [7]

    缩血管物质Ang Ⅱ可抑制细胞凋亡,而扩血管物质NO则可诱导细胞凋亡[3] 。我们 的研究发现,E组及C组肺组织细胞凋亡数明显高于正常对照、自然恢复及牛磺酸组,提示缺 氧可诱发细胞凋亡,血管紧张素转换酶抑制剂西拉普利可能有诱发细胞凋亡的作用。光镜下 见西拉普利治疗组肺组织损害最轻,可能与此有关。而同样具有扩血管效应的牛磺酸却未见 诱发细胞凋亡,此氨基酸具有细胞保护、调节钙稳态、直接稳定细胞膜结构的作用,究竟是 哪一种作用抑制细胞凋亡尚不清楚,值得进一步探讨。亦有可能它与细胞凋亡的发生与否毫 不关连,因自然恢复组凋亡细胞数亦少。实验结果还提示在缺氧后期肺动脉高压形成后,低 氧已不能诱发凋亡,细胞以增殖为主。Jones等在用野百合碱诱发的进行性肺动脉高压的研 究中发现,细胞凋亡也只在病程的早期发生[7]
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    综上所述,细胞凋亡可能与缺氧性肺动脉高压的形成和发展有关,寻找有效的诱导细胞凋亡 的药物可能会有助于预防及治疗。但由于目前这方面的报道不多,其与肺动脉高压的确切关 系及作用机理尚不清楚,还有待于进一步研究。

    参考文献

    1 Cho A, Courtman DW, Langille BL. Apoptosis(programmed cell death) in arteries of the neonatal lamb. Circ Res, 1995,76:168.

    2 Han DMK, Haudenschild CC, Hong MK, et al. Evidence for apoptosis in hu man atherogenesis and in a rat vascular injure model. Am J Pathol, 1995,147:267.
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    3 Pollman MJ, Yamada T, Horiuchi M, et al. Vasoactive substances regulat e vascular smooth muscle cell apoptosis. countervailing influences of nitric oxi de and angiotension Ⅱ. Circ Res, 1996,79:748.

    4 薜全福,谢剑鸣,胡长贵,等.常压缺氧大鼠肺动脉高压模型的建立.中华结核 和呼吸杂志,1989,12:350.

    5 Gorczyca W, Gong J, Darzynkiewiez Z. Detection of DNA strand breaks in individual apoptosis cells by the in situ terminal deoxynucleotidy 1 transferas e and nick translation assays. Cancer Res, 1993,53:1945.
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    6 Shimizu S, Eguchi Y, Kamiike W, et al. Induction of apoptosis as well as necrossis by hypoxia and predominant prevention of apoptosis by Bcl-2 and Bcl -Xl. Cancer Res, 1996,56:2161.

    7 Jones PL, Rabinovitch M. Tenascin-C is induced with progressiv e pulmon ary vascular disease in rats and is functionally related to increased smooth mus cle cell proliferation. Circ Res, 1996,79:1131.

    (1997年10月26日收稿,1998年3月10日修回), 百拇医药